Как выделить две плазмиды из нити E. Coli?

У меня есть клеточная линия E. coli, которую я использую для экспрессии белка с использованием двухплазмидной системы. Один дает AmpR и один KanR.

Для мутагенеза я хотел бы разделить плазмиды, чтобы повысить эффективность мутагенной реакции ПЦР. Я смог вылечить клетки плазмиды KanR, потому что она является низкокопийной, тогда как AmpR является высококопийной, поэтому я мог легко выращивать клетки только в ампициллине, и в итоге я получил только плазмиду AmpR. Однако мне не удалось сделать то же самое для выделения плазмиды KanR.

Моей следующей идеей было пропустить плазмиды через гель и провести экстракцию. Поскольку я не делал дайджест, было очень сложно различать группы, и в итоге я получил ничтожно малую прибыль. Я считаю, что плазмиды просто размазались по гелю из-за третичных структур.

Моя последняя надежда состоит в том, чтобы выполнить переваривание плазмид с использованием рестрикционного фермента, который разрезает каждую плазмиду один раз. Меня беспокоит то, что я не смогу получить правильную стехиометрию из-за того, что плазмиды одновременно присутствуют в совершенно разных концентрациях.

Есть ли у кого-нибудь какие-либо советы о том, как еще я мог изолировать плазмиды? Или, может быть, у кого-нибудь есть опыт запуска дайджеста на плазмидах с неизвестными концентрациями? Мне очень нужна помощь в этом. Проект мутагенеза продолжается уже несколько месяцев, и это даже не лаборатория молекулярной биологии... так что это отвлекает время от основных целей исследования!

Не могли бы вы переварить рестриктазой, которая разрезает плазмиду Amp один (или предпочтительно много) раз, но не разрезает плазмиду Kan? Затем вы могли бы очистить и преобразовать результат, и, по-видимому, это был бы почти весь Кан.
@Luigi Думаю, мой вопрос все еще будет заключаться в том, как будет работать стехиометрия? Если у меня где-то в 10-50 раз больше одной плазмиды, чем другой, будет ли это серьезной проблемой? Я полагаю, я мог бы сделать серийное разведение...
Я действительно не понимаю, почему здесь важна стехиометрия..? У вас избыток плазмиды Amp, но если вырезать ее всю, то останется только Kan. Если я правильно понял ваш вопрос
@Luigi Я просто имею в виду, что при настройке пищеварения или любой реакции вы готовите реагенты в определенных концентрациях. Например, для пищеварения они говорят одну «единицу» фермента на микрограмм ДНК.
По моему опыту, пока вы находитесь в пределах порядка величины с ферментами рестрикции, вы, вероятно, в порядке. Поскольку Amp в избытке, вы, вероятно, могли бы работать, используя общую концентрацию ДНК, и все было бы в порядке. Было бы сложнее понять, сколько нужно использовать для переваривания Кана, но я не совсем понимаю, почему вы вообще этого хотите.
Гелевый раствор — хорошая идея, чтобы избежать смазывания, попробуйте нагреть минипрепарат в течение 30 минут при 70 градусах по Цельсию, прежде чем наносить его на гель.

Ответы (1)

Ретрансформация должна дать вам чистую плазмиду. Превратите смесь плазмид в пустую E.coli (не используйте слишком много ДНК), посейте на Kan/Amp в зависимости от того, что вам нужно. Вероятность того, что одна клетка приняла обе плазмиды, чрезвычайно мала, и вы можете проверить это с помощью ПЦР колоний, чтобы быть уверенным.

В противном случае: поспрашивайте, должны быть (старые) запасы одиночных плазмид или глицериновые запасы E.coli, содержащие только одну из плазмид.

Третий вариант: взгляните на свой метод мутагенеза. Для ваших нужд могут быть методы, которые будут работать со смесью плазмид. Если вам нужен только один вариант или одна библиотека насыщения сайта, вы можете использовать, например, Quikchange. Я не вижу причин, по которым это не сработает на смеси плазмид.