Я использую двумерный гель-электрофорез для визуализации полиубиквитинированных белков. Однако, хотя я могу видеть актин и белок теплового шока, используя соответствующие антитела, я не могу визуализировать их, используя антитело против убиквитина. Может проблема в деградации?
Я провожу изоэлектрофокусировку при 200 В на ночь (минимум 18 часов) и 700 В последние 30 минут. Меня беспокоит, что я подаю больше вольт, чем нужно, потому что стандартный протокол 200 В на 20 минут, 450 В на 15 минут, 750 В на 15 минут, 2000 В на 30 минут, но из-за проблем с блоком питания я не могу этого сделать.
Я уверен, что у меня полиубиквитинирование, потому что я использую препарат, который запускает накопление полиубиквитинированного белка внутри клеток.
Я хотел бы также добавить, что клетки собирают соскобом в холодном PBS, а затем помещают в лед, и осадок также собирают при 4 градусах, чтобы предотвратить деградацию белка.
В лизатах клеток млекопитающих присутствуют стабильные убиквитинированные белки, даже если в клетках существуют активные протеосомы.
Во-первых, вы можете убедиться, что антитело применимо к WB.
Затем вы спросите, работает ли ваша система ВБ, использующая антитела. Вы можете оптимизировать состояние, используя только 1D SDS-PAGE, а затем WB.
Для условия изоэлектрической фокусировки, когда фокусировка завершена, вы получаете очень высокое электрическое сопротивление, поэтому вы можете захотеть контролировать ток после изменения напряжения до 700 В. Ток постепенно уменьшается и стабилизируется на каком-то уровне. Но не знаю можно ли увидеть стабилизацию на 700 В.
Вы также можете проверить, хорошо ли формируются основные белки, такие как актин, при ожидаемом pI. Это может сказать, если принудительное завершение завершено грубо.
МэттДмо
Био
Био
Крис
Био
МэттДмо